روش های خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی | Blood Collection

در آزمون های درون تنی (in vivo) حوزه زیست سازگاری، جهت بررسی پارامترهای خونی، لازم است تا از حیوانات تحت آزمون خونگیری انجام شود، بدین منظور بخش حیوانی مجموعه آزمایشگاه های سنجش و پایش کیاژن فارما با بکارگیری دامپزشک متخصص و تکنسین های باتجربه و خبره، خون گیری از حیوانات آزمون را با دقت کامل و بصورتی انجام می دهد تا حیوانات تحت آزمون متحمل حداقل درد و استرس شوند. متن زیر به منظور به اشتراک گذاری تجربیات و الزامات قانونی کار با حیوانات آزمایشگاهی- خونگیری آماده شده است.

#خونگیری از دم#خونگیری از قلب#خونگیری از گوش#خونگیری از چشم#خون گیری از قلب#خون گیری از دم#خون گیری از چشم#خون گیری از گوش#روش های خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#روش خونگیری از موش آزمایشگاهی#روش های خونگیری از موش آزمایشگاهی#نحوه خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#اخذ نمونه خون از حیوانات آزمایشگاهی#حجم خونگیری مجاز#جمع آوری خون از موش آزمایشگاهی#محل خونگیری از موش آزمایشگاهی#محل خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#خونگیری از سیاهرگ گردنی#خونگیری از سیاهرگ سافن#o,k’dvd hc pd,hkhj Hclhda’hid#o,k’dvd hc l,a Hclhda’hid#o,k ‘dvd hc l,a Hclhda’hid#o,k ‘dvd hc pd,hkhj Hclhda’hid#روش خون گیری از موش آزمایشگاهی#نحوه خون گیری از حیوانات آزمایشگاهی#نحوه جمع آوری خون از موش آزمایشگاهی#نحوه جمع آوری خون از حیوانات آزمایشگاهی

نکاتی که در زمان خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی باید رعایت شود چیست ؟! 

• یکی از مسائلی که در خونگیری از حیوات آزمایشگاهی بسیار حائز اهمیت است، عدم استرس حیوان آزمایشگاهی در حین گرفتن خون است. استرس هم عملیات اخذ نمونه‌ خون را دچار مشکل می کند و هم تاثیر منفی بر پارامترهای خونی خواهد داشت.
• جهت خونگیری از حیوان آزمایشگاهی باید از روش مقید کردن مناسب استفاده شود، در واقع مقید کردن صحیح، شرط لازم جهت خون گیری با حداقل استرس است.
• اگر حیوان استرس داشت، باید از ضد درد های موضعی یا بی‌حس کننده های سیستمیک استفاده شود، با این حال توصیه می شود که مسکن ها با احتیاط مصرف شوند زیرا ممکن است بر روی پارامترهای خونی تاثیر منفی بگذارد.
• بر حسب حجم خون مورد نیاز، باید از روش خونگیری مناسب، همراه با رعایت اخلاق کار با حیوانات آزمایشگاهی (ethics)، استفاده شود.
• آزمونگر باید آموزش دیده و تجربه کافی جهت خون گیری از حیوانات آزمایشگاهی را داشته باشد.
• استفاده از سوزن و سرنگ مناسب جهت خونگیری الزامی است. سوزن بزرگ باعث پاره شدن عروق و سوزن کوچک سبب تخریب گلبول های قرمز می شود.
• تکنسین حیوانخانه باید قبل از گرفتن خون از حیوانات آزمایشگاهی، موقعیت دقیق محل اخذ خون را شناسایی کند.
• رعایت حجم خونگیری مجاز در هر نوبت خون گیری الزامی است. به طور متوسط 6 تا 8 درصد کل وزن بدن را خون تشکیل می دهد، یعنی 60 تا 80 میکرولیتر به ازای هر گرم وزن بدن که حداکثر 10 درصد از کل حجم خون، یعنی ۶ تا ۸ میکرولیتر از خون به ازای هر گرم وزن بدن را در یک نوبت می توان جمع آوری کرد.
• رعایت تعداد دفعات خونگیری مجاز الزامی است. خون گیری از حیوات آزمایشگاهی با فاصله کمتر از 2 هفته توصیه نمی شود.

#خونگیری از دم#خونگیری از قلب#خونگیری از گوش#خونگیری از چشم#خون گیری از قلب#خون گیری از دم#خون گیری از چشم#خون گیری از گوش#روش های خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#روش خونگیری از موش آزمایشگاهی#روش های خونگیری از موش آزمایشگاهی#نحوه خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#اخذ نمونه خون از حیوانات آزمایشگاهی#حجم خونگیری مجاز#جمع آوری خون از موش آزمایشگاهی#محل خونگیری از موش آزمایشگاهی#محل خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#خونگیری از سیاهرگ گردنی#خونگیری از سیاهرگ سافن#o,k’dvd hc pd,hkhj Hclhda’hid#o,k’dvd hc l,a Hclhda’hid#o,k ‘dvd hc l,a Hclhda’hid#o,k ‘dvd hc pd,hkhj Hclhda’hid#روش خون گیری از موش آزمایشگاهی#نحوه خون گیری از حیوانات آزمایشگاهی#نحوه جمع آوری خون از موش آزمایشگاهی#نحوه جمع آوری خون از حیوانات آزمایشگاهی

انواع روش خونگیری از موش و رت آزمایشگاهی ؟!

نوع روش خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی باید بر اساس حجم خون مورد نیاز، انتخاب شود. جهت خون گیری در مقادیر کم، از روش های خونگیری از سیاهرگ تحت فکی و چشم و جهت خون گیری در مقادیر بالا، روش خونگیری از قلب انتخاب خواهد شد.

روش خونگیری از سیاهرگ تحت فکی موش چگونه است ؟! Submandibular Blood Collection

• خون گیری از سیاهرگ تحت فکی، روش پیشنهادی بخش جراحی کیاژن فارما، جهت اخذ خون از موش و رت آزمایشگاهی است، زیرا این روش بدون استرس است و ماکزیمم حجم مجاز خون و یا حتی بیشتر از حد مجاز، در یک نوبت قابل اخذ می باشد.
• در این روش نیاز به بیهوش کردن و یا کشتن حیوان نیست و یک روش کاملا ایمن می باشد.
• در بخش جراحی مجموعه آزمایشگاه های سنجش و پایش کیاژن فارما، از روش خون گیری از سیاهرگ تحت فکی جهت خونگیری از موش آزمایشگاهی در مرحل مختلف آزمون های سمیت سیستمیک استفاده می شود، بدین منظور مراحل زیر را انجام دهید:
• حیوان را به روش دستی مقید کنید.
• محل تلاقی زاویه خارجی چشم (lateral canthus) و لب ها را  ضد عفونی کنید.
• موضع را به آرامی توسط سوزن شماره ۱۸ یا ۲۰ سوراخ کنید و خون را داخل ویال جمع آوری کنید.

روش خونگیری سیاهرگ سافن موش چگونه است ؟! Blood Collection from Saphenous Vein

سوراخ کردن سیاهرگ سافن، روش مرسوم جهت خون گیری از حیوانات آزمایشگاهی نیست. بدلیل خونریزی زیاد بعد از خونگیری، بخش جراحی کیاژن فارما، این روش را پیشنهاد نمی کند.

• موهای ناحیه پا و اطراف دم حیوان را اصلاح کنید.
• حیوان را داخل لوله فالکون ۵۰ میلی لیتری قرار دهید و چین پوستی بین دم و ران را در دست نگه دارید.
• ناحیه خون گیری را ضدعفونی کرده و جهت جلوگیری از لخته شدن خون، مقداری وازلین روی ناحیه بمالید.
• موضع را شناسایی و ناحیه به آرامی توسط سوزن، سوراخ شده و خون توسط لوله مویین (haematocrit tube) جمع آوری شود.

روش خونگیری از دم موش چگونه است ؟! Blood Collection via Tail Cutting

خونگیری از موش آزمایشگاهی به روش قطع دم، روش خونگیری مناسب افراد کم تجربه است. در این روش، تنها چند قطره خون قابل جمع آوری است.

• حیوان را داخل مقید کننده قرار دهید.
• ناحیه دم را ضد عفونی و حدود 1 تا 2 میلی متر از انتهای دم را با قیچی قطع و خون را جمع آوری کنید.
• ناحیه برش خورده را حدود 30 ثانیه با گاز استریل فشار دهید تا خون بندی انجام شود.

روش خونگیری از حفره چشم موش چگونه است ؟! Blood Collection from Orbital Sinus

خونگیری از چشم باید تحت بیهوشی کامل انجام شود. روش خون گیری از چشم، یک روش کاملا تهاجمی است که بدلیل سادگی، اغلب توسط افراد کم تجربه انجام می شود. در این روش مقدار خون کمی قابل جمع آوری می باشد و خونگیری حداکثر 2 بار قابل اجرا می باشد که از محدودیت های این روش محسوب می شود.

در بسیاری از مراکز تحقیقاتی، پژوهشی و دانشگاه ها، دانشجویان کم تجربه، بدون بیهوش کردن حیوان اقدام به خونگیری از چشم موش آزمایشگاهی می کنند که این کار یک رفتار غیر انسانی است و مصداق عدم رعایت اخلاق کار با حیوانات آزمایشگاهی است، بنابراین در صورت مشاهده چنین رفتاری حتما کمیته اخلاق مرکز آموزشی خود را درجریان بگذارید.

“روش خونگیری از حفره چشم، بدلیل تهاجمی بودن، به هیچ عنوان توسط بخش جراحی کیاژن فارما توصیه نمی شود”

• حیوان را بیهوش کنید.
• کره چشم را بین انگشت اشاره و شست خود تثبیت کنید و با کشش مختصر، پلک را باز نگه دارید بطوریکه کره چشم بیرون بزند.
• لوله هماتوکریت را با زاویه 45 درجه وارد زاویه داخلی چشم (medial canthus) کنید.
• لوله را درحالیکه بین انگشتان می چرخانید به سمت جلو هدایت کنید تا خون وارد لوله شود.
• به محض ورود خون به لوله، به آرامی لوله را به عقب بکشید تا پر شود.
• پس از خون گیری، پلک حیوان را چند دقیقه ببندید تا خونبندی انجام شود.

روش خونگیری از سیاهرگ گردنی موش چگونه است ؟! Blood Collection from Jugular Vein

روش خون گیری از سیاهرگ گردنی موش نیاز به تجربه و مهارت دارد، بنابراین جهت اخذ نمونه خون به این روش، از تکنسین متخصص کمک بگیرید.

• حیوان را به روش دستی مقید و موقعیت سیاهرگ گردنی (jugular vein) را در فاصله 2 تا 4 میلی متر از مفصل جناغی – ترقوه ای (sternoclavicular junction) شناسایی کنید.
• مکان خونگیری را ضدعفونی و سوزن متصل به سرنگ را همزمان با آسپیره کردن (aspiration) وارد ورید کرده و به آرامی خون را جمع آوری کنید.

روش خونگیری از حفره قلب موش چگونه است ؟! Cardiac Blood Collection

روش خونگیری از حفره قلب موش، جهت جمع آوری خون در مقادیر زیاد (حداکثر حجم خون بدن) و تحت بیهوشی کامل انجام می شود. حیوان پس از خون گیری حتما باید براساس موازین اخلاقی معدوم گردد. در بخش جراحی مجموعه آزمایشگاه های سنجش و پایش کیاژن فارما، از روش خونگیری از قلب جهت جمع‌آوری خون در زمان خاتمه آزمون‌های سمیت سیستمیک، آزمون سمیت تولیدمثلی و تکامل جنین انجام می شود.

• حیوان را بیهوش و در وضعیت پشتی (dorsal recumbency) قرار دهید.
• ناحیه قفسه سینه حیوان را با انگشتان خود تثبیت کرده و سوزن را همزمان با آسپیره کردن، از زیر دیافراگم وارد قفسه صدری کنید.
• به محض مشاهده خون، موقعیت سوزن را تثبیت کرده و خون را به آرامی جمع آوری کنید.

#خونگیری از دم#خونگیری از قلب#خونگیری از گوش#خونگیری از چشم#خون گیری از قلب#خون گیری از دم#خون گیری از چشم#خون گیری از گوش#روش های خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#روش خونگیری از موش آزمایشگاهی#روش های خونگیری از موش آزمایشگاهی#نحوه خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#اخذ نمونه خون از حیوانات آزمایشگاهی#حجم خونگیری مجاز#جمع آوری خون از موش آزمایشگاهی#محل خونگیری از موش آزمایشگاهی#محل خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#خونگیری از سیاهرگ گردنی#خونگیری از سیاهرگ سافن#o,k’dvd hc pd,hkhj Hclhda’hid#o,k’dvd hc l,a Hclhda’hid#o,k ‘dvd hc l,a Hclhda’hid#o,k ‘dvd hc pd,hkhj Hclhda’hid#روش خون گیری از موش آزمایشگاهی#نحوه خون گیری از حیوانات آزمایشگاهی#نحوه جمع آوری خون از موش آزمایشگاهی#نحوه جمع آوری خون از حیوانات آزمایشگاهی

انواع روش خونگیری از خرگوش آزمایشگاهی ؟!

نوع روش خون گیری از خرگوش آزمایشگاهی باید بر اساس حجم خون مورد نیاز، انتخاب شود. جهت خونگیری در مقادیر کم، از روش خون گیری از سرخرگ میانی گوش و جهت خونگیری در مقادیر بالا، از روش خون گیری از قلب استفاده خواهد شد.

روش خونگیری از شریان میانی گوش خرگوش چگونه است ؟! Blood Collection form Auricular Artery

روش خون گیری از شریان میانی گوش خرگوش، جهت خونگیری تا مقادیر ۱۵ میلی لیتر استفاده می شود. این روش خون گیری، یک روش ایمن جهت جمع آوری خون از حیوانات آزمایشگاهی محسوب می شود.

• حیوان را داخل مقید کننده قرار دهید.
• موهای گوش حیوان را اصلاح و ناحیه خونگیری را ضد عفونی کنید.
• محلول لیدوکایین را جهت بیحسی گوش، روی موضع پوشش دهید.
• پس از حدودا ۱۰ دقیقه، گوش حیوان را ماساژ دهید تا عروق گوش پر خون شود.
• سوزن شماره ۱۸ تا ۲۴ (بسته به قطر سرخرگ) را بصورت افقی وارد سرخرگ میانی گوش (auricular artery) کرده و خون گیری را انجام دهید.
• پس از خون گیری، ناحیه تزریق را چند دقیقه بفشارید تا خون بندی انجام شود.
• خونگیری را از قسمت های انتهایی گوش شروع کنید تا در صورت بروز مشکل بتوانید از قسمت های نزدیک تر به قاعده گوش، مجددا خون گیری را انجام دهید.

روش خونگیری از سرخرگ کاروتید خرگوش چگونه است ؟! Blood Collection from Carotid Artery

روش خونگیری از سرخرگ کاروتید خرگوش، جهت جمع‌آوری خون در مقادیر زیاد و تحت بیهوشی کامل انجام می شود. این روش در موارد خاص و توسط جراح متخصص انجام می شود.

• حیوان را بیهوش و در وضعیت پشتی (dorsal recumbency) قرار دهید.
• موهای ناحیه گردن حیوان را اصلاح کرده و موضع را برش دهید تا سرخرگ کاروتیک ظاهر شود.
• دو طرف سرخرگ را لیگاتور کرده و کتتر را وارد سرخرگ کنید و نمونه خون را جمع آوری کنید.

روش خونگیری از حفره قلب خرگوش چگونه است ؟! Cardiac Blood Collection

روش خونگیری از حفره قلب خرگوش، جهت اخذ خون در مقادیر زیاد (ماکزیمم حجم قابل خون گیری و بسته به وزن حیوان تا ۱۵۰ میلی لیتر) و تحت بیهوشی کامل انجام می شود و حیوان پس از خون گیری باید براساس موازین اخلاقی معدوم گردد.

• حیوان را بیهوش و در وضعیت پشتی (dorsal recumbency) قرار دهید.
• ناحیه قفسه سینه حیوان را با انگشتان خود تثبیت کرده و سوزن را همزمان با آسپیره کردن، از زیر دیافراگم وارد قفسه صدری کنید.
• به محض مشاهده خون، موقعیت سوزن را تثبیت کرده و خون را به آرامی جمع آوری کنید.

#خونگیری از دم#خونگیری از قلب#خونگیری از گوش#خونگیری از چشم#خون گیری از قلب#خون گیری از دم#خون گیری از چشم#خون گیری از گوش#روش های خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#روش خونگیری از موش آزمایشگاهی#روش های خونگیری از موش آزمایشگاهی#نحوه خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#اخذ نمونه خون از حیوانات آزمایشگاهی#حجم خونگیری مجاز#جمع آوری خون از موش آزمایشگاهی#محل خونگیری از موش آزمایشگاهی#محل خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#خونگیری از سیاهرگ گردنی#خونگیری از سیاهرگ سافن#o,k’dvd hc pd,hkhj Hclhda’hid#o,k’dvd hc l,a Hclhda’hid#o,k ‘dvd hc l,a Hclhda’hid#o,k ‘dvd hc pd,hkhj Hclhda’hid#روش خون گیری از موش آزمایشگاهی#نحوه خون گیری از حیوانات آزمایشگاهی#نحوه جمع آوری خون از موش آزمایشگاهی#نحوه جمع آوری خون از حیوانات آزمایشگاهی

انواع روش خونگیری از همستر و خوکچه هندی آزمایشگاهی ؟!

کلیه مراحل خون گیری از همستر و خونگیری از خوکچه هندی آزمایشگاهی مشابه روش اشاره شده در موش آزمایشگاهی است. جهت خونگیری از همستر و خوکچه هندی آزمایشگاهی، بهتر است حیوان را بیهوش کنید، زیرا در حالت هوشیاری حیوان عکس العمل نشان داده و جیغ می زند و سبب ایجاد استرس در گروه حیوانات می شود.

استاندارد ها و مراجع

Machholz, E., Mulder, G., Ruiz, C., Corning, B. F., & Pritchett-Corning, K. R. (2012). Manual restraint and common compound administration routes in mice and rats. JoVE (Journal of Visualized Experiments), (67), e2771.

ICCVAM (2009). Recommended Performance Standards: Murine Local Lymph Node Assay, NIH Publication Number 09-7357, Research Triangle Park, NC: National Institute of Environmental Health Sciences.

استاندارد های زیست سازگاری

ISO 10993-1: Biological Evaluation of Medical Devices – Evaluation and testing within a risk management process.

ISO 10993-2: Biological Evaluation of Medical Devices – Animal welfare requirements.

ISO 10993-3: Biological Evaluation of Medical Devices – Tests for genotoxicity, carcinogenicity and reproductive toxicity.

ISO 10993-4: Biological Evaluation of Medical Devices – Selection of tests for interactions with blood.

ISO 10993-5: Biological Evaluation of Medical Devices – Tests for in vitro cytotoxicity.

ISO 10993-6: Biological Evaluation of Medical Devices – Tests for local effects after implantation.

ISO 10993-7: Biological Evaluation of Medical Devices – Ethylene oxide sterilization residuals.

ISO 10993-8: Biological Evaluation of Medical Devices – Selection and qualification of reference materials for biological tests.

ISO 10993-9: Biological Evaluation of Medical Devices – Framework for identification and quantification of potential degradation products.

ISO 10993-10: Biological Evaluation of Medical Devices – Tests for skin sensitization.

ISO 10993-11: Biological Evaluation of Medical Devices – Tests for systemic toxicity.

ISO 10993-12: Biological Evaluation of Medical Devices – Sample preparation and reference materials.

ISO 10993-13: Biological Evaluation of Medical Devices – Identification and quantification of degradation products from polymeric medical devices.

ISO 10993-14: Biological Evaluation of Medical Devices – Identification and quantification of degradation products from ceramics.

ISO 10993-15: Biological Evaluation of Medical Devices – Identification and quantification of degradation products from metals and alloys.

ISO 10993-16: Biological Evaluation of Medical Devices – Toxicokinetic study design for degradation products and leachables.

ISO 10993-17: Biological Evaluation of Medical Devices – Toxicological risk assessment of medical device constituents.

ISO 10993-18: Biological Evaluation of Medical Devices – Chemical characterization of medical device materials within a risk management process.

ISO 10993-19: Biological Evaluation of Medical Devices – Physico-chemical, morphological and topographical characterization of materials.

ISO 10993-20: Biological Evaluation of Medical Devices – Principles and methods for immunotoxicology testing of medical devices.

ISO 10993-22: Biological Evaluation of Medical Devices – Guidance on nanomaterials.

ISO 10993-23: Biological Evaluation of Medical Devices – Tests for irritation.

OECD Test No. 401: Guidelines for the Testing of Chemicals – Acute Oral Toxicity.

OECD Test No. 402: Guidelines for the Testing of Chemicals – Acute Dermal Toxicity.

OECD Test No. 403: Guidelines for the Testing of Chemicals – Acute Inhalation Toxicity.

OECD Test No. 404: Guidelines for the Testing of Chemicals – Acute Dermal Irritation/Corrosion.

OECD Test No. 405: Guidelines for the Testing of Chemicals – Acute Eye Irritation/Corrosion.

OECD Test No. 406: Guidelines for the Testing of Chemicals – Skin Sensitisation.

OECD Test No. 407: Guidelines for the Testing of Chemicals – Repeated Dose 28-day Oral Toxicity Study in Rodents.

OECD Test No. 408: Guidelines for the Testing of Chemicals – Repeated Dose 90-Day Oral Toxicity Study in Rodents.

OECD Test No. 409: Guidelines for the Testing of Chemicals – Repeated Dose 90-Day Oral Toxicity Study in Non-Rodents.

OECD Test No. 410: Guidelines for the Testing of Chemicals – Repeated Dose Dermal Toxicity: 21/28-day Study.

OECD Test No. 411: Guidelines for the Testing of Chemicals – Subchronic Dermal Toxicity: 90-day Study.

OECD Test No. 412: Guidelines for the Testing of Chemicals – Subacute Inhalation Toxicity: 28-Day Study.

OECD Test No. 413: Guidelines for the Testing of Chemicals – Subchronic Inhalation Toxicity: 90-day Study.

OECD Test No. 414: Guidelines for the Testing of Chemicals – Prenatal Developmental Toxicity Study.

OECD Test No. 415: Guidelines for the Testing of Chemicals – One-Generation Reproduction Toxicity Study.

OECD Test No. 416: Guidelines for the Testing of Chemicals – Two-Generation Reproduction Toxicity.

OECD Test No. 417: Guidelines for the Testing of Chemicals – Toxicokinetics.

OECD Test No. 418: Guidelines for the Testing of Chemicals – Delayed Neurotoxicity of Organophosphorus Substances Following Acute Exposure.

OECD Test No. 419: Guidelines for the Testing of Chemicals – Delayed Neurotoxicity of Organophosphorus Substances: 28-day Repeated Dose Study.

OECD Test No. 420: Guidelines for the Testing of Chemicals – Acute Oral Toxicity – Fixed Dose Procedure.

OECD Test No. 421: Guidelines for the Testing of Chemicals – Reproduction/Developmental Toxicity Screening Test.

OECD Test No. 422: Guidelines for the Testing of Chemicals – Combined Repeated Dose Toxicity Study with the Reproduction/Developmental Toxicity Screening Test.

OECD Test No. 423: Guidelines for the Testing of Chemicals – Acute Oral toxicity – Acute Toxic Class Method.

OECD Test No. 424: Guidelines for the Testing of Chemicals – Neurotoxicity Study in Rodents.

OECD Test No. 425: Guidelines for the Testing of Chemicals – Acute Oral Toxicity: Up-and-Down Procedure.

OECD Test No. 426: Guidelines for the Testing of Chemicals – Developmental Neurotoxicity Study.

OECD Test No. 427: Guidelines for the Testing of Chemicals – Skin Absorption: In Vivo Method.

OECD Test No. 428: Guidelines for the Testing of Chemicals – Skin Absorption: In Vitro Method.

OECD Test No. 429: Guidelines for the Testing of Chemicals – Skin Sensitisation.

OECD Test No. 430: Guidelines for the Testing of Chemicals – In Vitro Skin Corrosion: Transcutaneous Electrical Resistance Test Method (TER).

OECD Test No. 431: Guidelines for the Testing of Chemicals – In vitro skin corrosion: reconstructed human epidermis (RHE) test method.

OECD Test No. 432: Guidelines for the Testing of Chemicals – In Vitro 3T3 NRU Phototoxicity Test.

OECD Test No. 433: Guidelines for the Testing of Chemicals – Acute Inhalation Toxicity: Fixed Concentration Procedure.

OECD Test No. 434: Guidelines for the Testing of Chemicals – Acute Dermal Toxicity – Fixed Dose Procedure.

OECD Test No. 435: Guidelines for the Testing of Chemicals – In Vitro Membrane Barrier Test Method for Skin Corrosion.

OECD Test No. 436: Guidelines for the Testing of Chemicals – Acute Inhalation Toxicity – Acute Toxic Class Method.

OECD Test No. 437: Guidelines for the Testing of Chemicals – Bovine Corneal Opacity and Permeability Test Method for Identifying i) Chemicals Inducing Serious Eye Damage and ii) Chemicals Not Requiring Classification for Eye Irritation or Serious Eye Damage.

OECD Test No. 438: Isolated Chicken Eye Test Method for Identifying i) Chemicals Inducing Serious Eye Damage and ii) Chemicals Not Requiring Classification for Eye Irritation or Serious Eye Damage.

OECD Test No. 439: Guidelines for the Testing of Chemicals – In Vitro Skin Irritation: Reconstructed Human Epidermis Test Method.

OECD Test No. 440: Guidelines for the Testing of Chemicals – Uterotrophic Bioassay in Rodents.

OECD Test No. 441: Guidelines for the Testing of Chemicals – Hershberger Bioassay in Rats.

OECD Test No. 442A: Guidelines for the Testing of Chemicals – Skin Sensitization – Local Lymph Node Assay: DA.

OECD Test No. 442B: Guidelines for the Testing of Chemicals – Skin Sensitization – Local Lymph Node Assay: BrdU-ELISA or –FCM.

OECD Test No. 442C: Guidelines for the Testing of Chemicals – In Chemico Skin Sensitisation – Assays addressing the Adverse Outcome Pathway key event on covalent binding to proteins.

OECD Test No. 442D: Guidelines for the Testing of Chemicals – In Vitro Skin Sensitisation – ARE-Nrf2 Luciferase Test Method.

OECD Test No. 442E: Guidelines for the Testing of Chemicals – 442E: In Vitro Skin Sensitisation – In Vitro Skin Sensitisation assays addressing the Key Event on activation of dendritic cells on the Adverse Outcome Pathway for Skin Sensitisation.

OECD Test No. 443: Guidelines for the Testing of Chemicals – Extended One-Generation Reproductive Toxicity Study.

OECD Test No. 451: Guidelines for the Testing of Chemicals – Carcinogenicity Studies.

OECD Test No. 452: Guidelines for the Testing of Chemicals – Chronic Toxicity Studies.

OECD Test No. 453: Guidelines for the Testing of Chemicals – Combined Chronic Toxicity/Carcinogenicity Studies.

OECD Test No. 455: Guidelines for the Testing of Chemicals – Performance-Based Test Guideline for Stably Transfected Transactivation In Vitro Assays to Detect Estrogen Receptor Agonists and Antagonists.

OECD Test No. 456: Guidelines for the Testing of Chemicals – H295R Steroidogenesis Assay.

OECD Test No. 457: Guidelines for the Testing of Chemicals – BG1Luc Estrogen Receptor Transactivation Test Method for Identifying Estrogen Receptor Agonists and Antagonists.

OECD Test No. 458: Guidelines for the Testing of Chemicals – Stably Transfected Human Androgen Receptor Transcriptional Activation Assay for Detection of Androgenic Agonist and Antagonist Activity of Chemicals.

OECD Test No. 460: Guidelines for the Testing of Chemicals – Fluorescein Leakage Test Method for Identifying Ocular Corrosives and Severe Irritants.

OECD Test No. 471: Guidelines for the Testing of Chemicals – Bacterial Reverse Mutation Test.

OECD Test No. 473: Guidelines for the Testing of Chemicals – In Vitro Mammalian Chromosomal Aberration Test.

OECD Test No. 474: Guidelines for the Testing of Chemicals – Mammalian Erythrocyte Micronucleus Test.

OECD Test No. 475: Guidelines for the Testing of Chemicals – Mammalian Bone Marrow Chromosomal Aberration Test.

OECD Test No. 476: Guidelines for the Testing of Chemicals – In Vitro Mammalian Cell Gene Mutation Tests using the Hprt and xprt genes.

OECD Test No. 477: Guidelines for the Testing of Chemicals – Genetic Toxicology: Sex-Linked Recessive Lethal Test in Drosophila melanogaster.

OECD Test No. 478: Guidelines for the Testing of Chemicals – Rodent Dominant Lethal Test.

OECD Test No. 479: Guidelines for the Testing of Chemicals – Genetic Toxicology: In vitro Sister Chromatid Exchange Assay in Mammalian Cells.

OECD Test No. 480: Guidelines for the Testing of Chemicals – Genetic Toxicology: Saccharomyces cerevisiae, Gene Mutation Assay.

OECD Test No. 481: Guidelines for the Testing of Chemicals – Genetic Toxicology: Saacharomyces cerevisiae, Miotic Recombination Assay.

OECD Test No. 482: Guidelines for the Testing of Chemicals – Genetic Toxicology: DNA Damage and Repair, Unscheduled DNA Synthesis in Mammalian Cells in vitro.

OECD Test No. 483: Guidelines for the Testing of Chemicals – Mammalian Spermatogonial Chromosomal Aberration Test.

OECD Test No. 484: Guidelines for the Testing of Chemicals – Genetic Toxicology: Mouse Spot Test.

OECD Test No. 485: Guidelines for the Testing of Chemicals – Genetic toxicology, Mouse Heritable Translocation Assay.

OECD Test No. 486: Guidelines for the Testing of Chemicals – Unscheduled DNA Synthesis (UDS) Test with Mammalian Liver Cells in vivo.

OECD Test No. 487: Guidelines for the Testing of Chemicals – In Vitro Mammalian Cell Micronucleus Test.

OECD Test No. 488: Guidelines for the Testing of Chemicals – Transgenic Rodent Somatic and Germ Cell Gene Mutation Assays.

OECD Test No. 489: Guidelines for the Testing of Chemicals – In Vivo Mammalian Alkaline Comet Assay.

OECD Test No. 490: Guidelines for the Testing of Chemicals – In Vitro Mammalian Cell Gene Mutation Tests Using the Thymidine Kinase Gene.

OECD Test No. 491: Guidelines for the Testing of Chemicals – Short Time Exposure In Vitro Test Method for Identifying i) Chemicals Inducing Serious Eye Damage and ii) Chemicals Not Requiring Classification for Eye Irritation or Serious Eye Damage.

OECD Test No. 492: Guidelines for the Testing of Chemicals – Reconstructed human Cornea-like Epithelium (RhCE) test method for identifying chemicals not requiring classification and labelling for eye irritation or serious eye damage.

OECD Test No. 493: Guidelines for the Testing of Chemicals – Performance-Based Test Guideline for Human Recombinant Estrogen Receptor (hrER) In Vitro Assays to Detect Chemicals with ER Binding Affinity.

OECD Test No. 494: Guidelines for the Testing of Chemicals – Vitrigel-Eye Irritancy Test Method for Identifying Chemicals Not Requiring Classification and Labelling for Eye Irritation or Serious Eye Damage.

OECD Test No. 495: Guidelines for the Testing of Chemicals – Ros (Reactive Oxygen Species) Assay for Photoreactivity.

OECD Test No. 496: Guidelines for the Testing of Chemicals – In vitro Macromolecular Test Method for Identifying Chemicals Inducing Serious Eye Damage and Chemicals Not Requiring Classification for Eye Irritation or Serious Eye Damage.

OECD Test No. 497: Guidelines for the Testing of Chemicals – Defined Approaches on Skin Sensitisation.

OECD Test No. 498: Guidelines for the Testing of Chemicals – In vitro Phototoxicity – Reconstructed Human Epidermis Phototoxicity test method.

OECD Test No. 19: Guidance Document on the Recognition, Assessment and Use of Clinical Signs as Humane Endpoints for Experimental Animals Used in Safety Evaluation. Environmental Health and Safety Monograph Series on Testing and Assessment.

#خونگیری از دم#خونگیری از قلب#خونگیری از گوش#خونگیری از چشم#خون گیری از قلب#خون گیری از دم#خون گیری از چشم#خون گیری از گوش#روش های خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#روش خونگیری از موش آزمایشگاهی#روش های خونگیری از موش آزمایشگاهی#نحوه خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#اخذ نمونه خون از حیوانات آزمایشگاهی#حجم خونگیری مجاز#جمع آوری خون از موش آزمایشگاهی#محل خونگیری از موش آزمایشگاهی#محل خونگیری از حیوانات آزمایشگاهی#خونگیری از سیاهرگ گردنی#خونگیری از سیاهرگ سافن#o,k’dvd hc pd,hkhj Hclhda’hid#o,k’dvd hc l,a Hclhda’hid#o,k ‘dvd hc l,a Hclhda’hid#o,k ‘dvd hc pd,hkhj Hclhda’hid